一、蛋白浓度测定的常见方法
1、考马斯亮蓝G250法测定蛋白浓度（bradford法）
1）实验原理
考马斯亮蓝法测定蛋白质浓度，是利用蛋白质―染料结合的原理，定量的测定微量蛋白浓度的快速、灵敏的方法。考马斯亮蓝G－250存在着两种不同的颜色形式，红色和蓝色。它和蛋白质通过范德华力结合，在一定蛋白质浓度范围内，蛋白质和染料结合符合比尔定律（Beer’s law）。此染料与蛋白质结合后颜色有红色形式和蓝色形式，最大光吸收由465nm变成595nm，通过测定595nm吸光度可测定蛋白质的含量。另外，反应体系中呈现的颜色变化主要是G-250分子间疏水相互作用形成的聚集体聚集程度不同引起的。单体形式表现为蓝色，单体和聚集体共存时表现为绿色，全为聚集体形式呈现为棕红色。影响因素主要为溶液体系中磷酸、乙醇、NaCl的含量。
蛋白质和染料结合是一个很快的过程，约2min即可反应完全，呈现最大光吸收，并可稳定1h，之后，蛋白质―染料复合物发生聚合并沉淀出来。蛋白质―染料复合物具有很高的消光系数，使得在测定蛋白质浓度时灵敏度很高，在测定溶液中含蛋白质5µL/mL时就有0.275光吸收值的变化，比Lowry法灵敏4倍，测定范围为10－100µg蛋白质，微量测定法测定范围是1－10µg蛋白质。此反应重复性好，精确度高，线性关系好。
摇匀，1h内以0号管为空白对照，在595nm处比色。
②未知样品蛋白质浓度测定
取合适的未知样品体积，使其测定值在标准曲线的直线范围内。根据所测定的A595nm值，在标准曲线上查出其相当于标准蛋白的量，从而计算出未知样品的蛋白质浓度（mg/ml）。
2、BCA法测量蛋白质浓度
1）实验原理
BCA检测法是Lowry测定法的一种改进方法。蛋白质分子中的肽键在碱性条件下能与Cu2 络合生成络合物，同时将Cu2 还原成Cu 。二喹啉甲酸及其钠盐是一种溶于水的化合物，在碱性条件下，可以和Cu 结合生成深紫色的化合物，这种稳定的化合物在562nm处具有强吸收值，并且化合物颜色的深浅与蛋白质的浓度成正比。故可用比色的方法确定蛋白质的含量。
2）优缺点
与Lowery法相比，BCA蛋白测定方法灵敏度高，操作简单，试剂及其形成的颜色复合物稳定性俱佳，并且受干扰物质影响小。与Bradford法相比，BCA法的显著优点是不受去垢剂的影响。BCA法蛋白质浓度检测范围为10-2000 µg/ml。检测0.5~10 µg/ml微量蛋白时应采用浓缩试剂，并需要在60ºC反应。
但BCA法在样品含有脂类物质时将明显提高光吸收值。蛋白样品中EDTA或葡萄糖浓度大于10 mM不能使用BCA方法。
3）试剂
①BCA试剂的配制
试剂A（1L）：分别称取10g BCA (1%)，20g Na2CO3·H2O (2%)，1.6g Na2C4H4O6·2H2O(0.16%)，4g NaOH (0.4%) ，9.5g NaHCO3 (0.95) ，加水至1L，用NaOH或固体NaHCO3调节pH值至11.25。
试剂B（50ml）：取2g CuSO4·5H2O (4%)，加蒸馏水至50ml。
BCA试剂：取50份试剂A与1份试剂B混合均匀。此试剂可稳定一周。
②标准蛋白质溶液：称取40mg牛血清白蛋白，溶于蒸馏水中并定容至100ml，制成400μg/ml的溶液。
4）实验步骤
①绘制标准曲线（略）。
②试剂加完后，混匀，于37℃保温30min，冷却至室温后，以0号管为对照，在562nm处比色。
③未知样品蛋白质浓度测定
3、紫外吸收法
1）实验原理
大多数蛋白质分子结构中含有芳香族氨基酸（酪氨酸和色氨酸）残基，使蛋白质在280nm的紫外光区产生最大光吸收。当入射光、吸光系数和溶液的光径长度L不变时，这一波长范围内的吸光值与蛋白质浓度成正比，利用这一特性可定量测定蛋白质的含量。
2）优缺点
此操作简便，测定迅速，低浓度盐类不干扰测定。但只适合测试较纯净、成分相对单一的蛋白质，容易受到平行物质的干扰，如DNA的干扰；此外，此方法敏感度较低，要求蛋白的浓度较高（0.1-0.5mg/ml）。且玻璃器皿会吸收紫外线，需要石英等特殊材料器具。
3）试剂
①标准蛋白质溶液：精确配制2mg/ml的酪蛋白溶液。
②样品溶液
4）实验步骤
①绘制标准曲线（略）
②测定未知样品溶液
5）结果分析
根据样品溶液的光密度值，在绘制好的标准曲线图中查出样品溶液的蛋白质含量。
此外，紫外吸收法也可以不制作标准曲线，直接测280nm的OD值，然后通过OD值与校正系数直接求得未知蛋白的浓度。
上述三种方法在测定吸光值时，既可以使用紫外分光光度仪、酶标仪，甚至也可以使用Nanodrop微量计。它们所需要的样品量逐渐减少，所以制作标曲时不同仪器加入的试剂量也不尽相同，需要具体分析。
二、利用Excel软件拟合标准曲线
1、将标准蛋白测得的OD值及对应的浓度输入Excel表格中，并求出重复测量的平均值。
2、将0ug/ml对照管的OD值减去，进行背景校正。
3、将标准浓度和对应的校正值转变为列。（复制，选择性黏贴，转置）
4、选中校正值和浓度的数值，然后找到excel工具栏“插入”，在下拉窗口中选择“散点图”图标，并选择不带曲线的散点图。
5、在弹出的“标准曲线”图中，找到任意一个“散点”，右击该点，在弹出的菜单中选择“添加趋势线”。
6、接着会弹出一个参数选择窗口，在该窗口中选择“线性”趋势线，并勾选”显示公式“、”显示R平方值“。
7、不同的Excel版本，略微有些区别，选定参数后，点击“确定“。即可得到完整的标准曲线。一般R平方值≥0.99，即说明该拟合曲线可以使用。
8、将测得的未知蛋白OD值代入标准曲线公式”y = 1316.5x – 3.6272“中，即可求得未知蛋白的浓度。
文章来自：每日生物评论，更多信息关注微信。
,
