1.首先要固定小鼠，把小鼠放在盒子里面，让它的尾巴伸在盒盖的外面，用手抓住小鼠尾巴，轻轻往外拽。这种固定方法，小鼠可以在盒子里面活动，固定的也不是很牢固，但足以用来注射了。还有的固定方法就是用实验室用50 mL离心管，在盖子上破一个洞，可以让小鼠的尾巴伸出来（中间的小孔可以用胶布缠一下，防止锐利的边缘割伤小鼠尾巴），然后在管壁上破几个孔用来透气。如果小鼠比较小可以在里面放一团脱脂棉。用的时候用宽胶带固定在操作台(管口在桌沿)即可，一般拎着鼠尾放在管口小鼠都会进去的。而且可以用来固定在铁架台上，方便操作。
2.固定好小鼠后就是注射了，一般用一次性的1 mL的注射器就行，玻璃的1 mL的注射器也可以用，针头用4号的（不要用1ml注射器配套的针头，太大了！）。建议选用胰岛素注射针，可按需选择。
BD胰岛素针
3.注射前首先要让小鼠的血管充盈。可以采用75%的酒精棉球擦拭的方法或者采用温水浸泡的方法。若小鼠的血管很不清楚，推荐采用温水浸泡的方法，水温以不烫手为宜。温水浸泡2～3分钟后，取出小鼠尾巴，用干棉球擦拭。待血管充盈后，酒精棉球擦拭后就可以进针了。若血管还不充盈，可以反复用温水浸泡，切不可冒险盲目注射。
4.小鼠鼠尾有三条静脉，左右两侧及背部各一条，腹侧的那条是动脉。如尾静脉注射的话，左右两侧的静脉比较固定而多采用。一般要求进针部位靠近小鼠的尾端，这样若注射失败的话，还可以再向上选择进针点。但是进针部位也不可以太靠下，因为越往下，静脉越细，操作越难，一般以小鼠尾巴下三分之一的位置。
小鼠尾部左右两侧的静脉和腹侧的动脉
5.进针时操作者左手食指和拇指固定住小鼠的尾巴，让小鼠的尾巴在经过拇指后向下弯曲，进针点靠近拇指指甲。针头和血管呈约30°角，针尖斜面朝上，轻轻挑刺入皮肤后针头立即和血管平行，一般情况下，一次就可以进入血管，可将针头刺入血管一大半，左右轻轻晃动针头，确定针头在血管内，就可以推注药液了，推注的过程应该没有明显阻力，血管也不会鼓起，为进针成功。推液时动作宜轻柔，若发现血管鼓起，那是针头没有刺入血管，需立即拔出针头。
,
